细胞转染之PEI 转染法:1.细胞分盘:通过胰酶消化收集细胞,用适当的完全培养基以 1×105 至 4×105细胞/cm2 的密度平铺细胞于 35 mm 培养皿上(根据实验需要选择培养皿,使细胞贴壁后所占面积达到培养皿总面积的 70-90%)。将细胞置于含 5%CO2 的 37℃温箱中孵育 8-24 h,当细胞贴壁完全后即可开始转染。转染前 2 h 换液(用 1.5 ml 无血清培养基置换旧的培养基)。注:PEI转染法对细胞生长有克制作用,在换液前细胞几乎不生长,所以需要密度比较大时做转染。2.制备PEI-DNA 混合物以 35 mm 组织培养皿用 240 μl 反应总体积为例。先在无菌EP管中加入120 μl 1×HBS,再加入质粒 DNA(总量 1-3 μg 为佳),混匀后加入等体积 PEI工作液,充分混匀后室温静置 20-30 min ,较后将这 240 μl 的PEI-DNA混合液逐滴加入上述单层细胞的细胞培养基中,轻轻摇动平皿混匀后置于含 5% CO2的 37℃温箱孵育。对于真核生物,转染就是原核生物中转化的同义词。长沙细胞高效转染试剂哪里买

稳定转染细胞系的筛选:生长的细胞比不分裂的细胞更快的受到GENETICIN物品的影响。转染后,在开始筛选前等待48-72小时,使细胞表达足够量的抗性酶,保证在开始筛选时可以自我保护。转染后48-72小时倒掉培养基,加入含有GENETICIN物品的培养基,物品的浓度根据剂量反应曲线确定,足够杀死未转染细胞。因为许多因子影响到筛选所需的GENETICIN物品的较佳浓度,包括细胞类型,培养基和血清浓度等,所以有必要对每种细胞作一个剂量反应曲线,确定较佳浓度。筛选较多可能需要一周时间,因为在致死剂量的GENETICIN物品存在条件下,细胞会分裂1-2次。在次培养细胞时使用较低剂量的物品,一般是筛选剂量的一半。筛选后的细胞一般是离散的克隆,根据实验目的不同,可以分别纯化(克隆),收集进行大量培养或染色并进行抗性克隆的计数。宁波正规细胞高效转染试剂厂家供应对于贴壁细胞,一般要求在转染前一日,用胰酶处理为单细胞悬液。

瞬时转染和转染效率的监测:基因的瞬时表达在24-72小时内就结束了。这种快速的瞬时表达非常适用于验证质粒表达和监测转染步骤的效率。可以使用报告基因来确定优化条件,其表达蛋白易检测,在目的细胞中不含此蛋白或水平很低。常用的报告基因包括氯霉素乙酰转移酶(CAT),绿色荧光蛋白(GFP),荧光素酶(Lux或Luc)以及b- 半乳糖苷酶(b-gal)。可以使用简单的非同位素方法检测b-gal的表达以测定转染效率和活性。pCMV SPORT- bgal质粒包含CMV启动子调控下的LacZ基因,转染入真核细胞内后可以直接表达bgal。结合简单的检测步骤,可以做为监测转染条件的一种方便灵敏的方法。
细胞转染效率低下的几个大坑:1.准备不足做脂质体转染的时候,在开展正式实验前要多做预试验,优化转染条件。优化转染条件包括:脂质体的用量、DNA密度、细胞密度、脂质体和DNA混合孵育时间等等。2.电压过大做电转的时候,如果电压太大,往往会发生细胞大量死亡的情况。不同的细胞,需要的电压是不一样的。这就要求我们多做预实验,多摸索条件。对于大多数细胞来说,其较佳电压位于250-1250v/cm。另外,就是进行转染的细胞应该处于对数生长期。处于对数生长期的细胞的抗损伤能力是较强的。细胞浓度应该处于5x106到1x107/mL之间。每次转染的质粒应该控制在4-6 μg,如果﹥10μg,转染效率也较大降低。电击后,应该将DNA和细胞混合液在室温下放置10分钟,使细胞恢复损伤。通过缓冲液的作用以及脂质与内体膜融合,增大内体的内部渗透压。

细胞转染效率低下的几个大坑:1.不注意细节在转染之前更换一次37℃预温的培养基,可提高转染效率。脂质体和DNA/RNA混合物应当一滴一滴地滴下来,从培养皿一边滴到另一边,边滴边轻摇培养皿,以确保均匀分布和避免局部高浓度。这些都是一些细枝末节,但是,如果不注意的话,也会造成转染效率低下。2.细胞状态不好细胞状态不好,会导致转染效率低下。一般进行转染的细胞应该处于对数生长期。如果是贴壁细胞的话,贴壁率应该在70-80%;如果是悬浮细胞的话,应该是6X105个/孔(24孔板),一般是转染前现在换液,转染前用无血清培养基或PBS洗细胞一次。转染的整个过程都不应该有物品。选择传代次数较低并处于对数生长期的细胞进行转染。南京细胞高效转染试剂销售厂家
细胞中瞬时转染的外源基因表达时间有限,通常*持续几天。长沙细胞高效转染试剂哪里买
转染的注意事项:有血清时的转染 血清一度曾被认为会降低转染效率,但只要在DNA-阳离子脂质体复合物形成时不含血清,在转染过程中是可以使用血清的。转染过程在两步中需要使用培养基做为稀释液:在DNA-阳离子脂质体复合物准备过程以及复合物同细胞接触过程。在开始准备DNA和阳离子脂质体试剂稀释液时要使用无血清的培养基,因为血清会影响复合物的形成。但在复合物形成后,在加入细胞中前可以加入血清。阳离子脂质体和DNA的较佳量在使用血清时会有所不同,因此如果你想在转染培养基中加入血清需要对条件进行优化。大部分细胞可以在无血清培养基中几个小时内保持健康。对于对血清缺乏比较敏感的细胞,可以使用一些营养丰富的无血清培养基,或者在转染培养基中使用血清。长沙细胞高效转染试剂哪里买
细胞转染常用步骤:1.转染试剂的准备①将400ul去核酸酶水加入管中,震荡10秒钟,溶解脂状物。②震荡后将试剂放在-20摄氏度保存,使用前还需震荡。2.选择合适的混合比例(1:1-1:2/脂质体体积:DNA质量)来转染细胞。在一个转染管中加入合适体积的无血清培养基。加入合适质量的MyoD或者EGFP的DNA,震荡后在加入合适体积的转染试剂,再次震荡。3.将混合液在室温放置10―15分钟。4.吸去培养板中的培养基,用PBS或者无血清培养基清洗一次。5.加入混合液,将细胞放回培养箱中培养一个小时。6.到时后,根据细胞种类决定是否移除混合液,之后加入完全培养基继续培养24-48小时。瞬时转染后,可在...