细胞转染为什么不能加血清:不同的细胞及转染试剂要求转染的条件是不同 的。较好是在靠前次实验前做一个预实验,比如:HeLa,293,CHO,COS7, MCF-7,HepG2等细胞,是否加血清,对不同的细胞是有不同的影响的,有些细胞是可以有血清的,有些加血清就会受影响。转染后在6小时左右较好换液且换为有血清的培养基,其一因为普通转染试剂对细胞的毒性作用大,其二可降低因血清的缺乏引起的细胞的死亡。转染时不加血清是防止血清的干扰作用,转染后可适时加入。加入过早会引起未转染细胞的优势生长,过晚会引起较多细胞死亡。可实时观察1/5细胞变圆的时候加入血清。瞬时表达分析检测未重组质粒DNA上基因的表达。太原细胞高效转染试剂报价
细胞转染效率影响因素:1.细胞密度一般来说,当细胞密度达到60%~80%时进行转染可以取得较高的转染效率,过低或过高都会影响转染效果。2.细胞生长状态这点非常关键,很多时候传代次数太少或者太多都将导致细胞对转染试剂敏感度的改变。因此,为了提高转染效率以及转染稳定性、降低细胞毒性,应尽量使用适度传代的细胞系,并在不同次实验时保持细胞传代次数的一致性。3.细胞种类不同细胞种类的细胞在做转染时所需要的转染体系是不同的,不能一种体系用在所有类型细胞的转染实验。合肥细胞高效转染试剂直销价在转染过程中是可以使用血清的。
如何高效率实现细胞转染:阳离子脂质体转染试剂脂质转染试剂,以其适用宿主范围广,操作简便,对细胞毒性小,转染效率高受到研究者们的青睐。脂质体(liposome)是一种人工膜,在水相中形成具有双分子层结构的球形封闭囊泡。脂质体可以和带负电荷的核酸结合后重新形成复合物,当复合物接近细胞膜时,通过内吞作用形成内体(endosomes)进入细胞,通过缓冲液的作用以及脂质与内体膜融合,增大内体的内部渗透压,使内体结构破坏,释放出核酸。随后DNA复合物被释放进入细胞核内。对于普通细胞系,一般的瞬时转染方法多采用脂质体法。利用脂质体转染法较重要的就是防止其毒性,因此脂质体与质粒的比例,细胞密度以及转染的时间长短和培养基中血清的含量都是影响转染效率的重要因素,通过实验优化合适的转染条件对于转染效率的提高很重要。
影响转染试验的因素:细胞状态变化:(1)转染试剂与细胞不匹配细胞转染较适合的不是原代细胞,也不是传代很多次的细胞。这是因为细胞培养在实验室中保存数月和数年后会经历突变,总染色体重组或基因调控变化等而演化。这会导致和转染相关的细胞行为的变化。较适合转染的细胞是经过几次传代后达到对数生长期的细胞,细胞生长旺盛,较容易转染。(2)把握时机没错!转染也有适当的时机,相比较非分裂细胞——分裂细胞往往要比静止细胞更易于摄取并表达外源DNA。因此对大多数转染操作而言,细胞都在转染当天或前现在种板。同样重要的是细胞在种板进行转染时不应处于过度生长的状态,如细胞数量过多,互相叠加,营养物质耗竭,代谢废物积聚,转染率低下也是很正常的!一般的瞬时转染 方法多采用脂质体法。
细胞转染的注意事项:转染是将外源性基因导入细胞内的一种专门技术。分为物理介导方法:电穿孔法、显微注射和基因;化学介导方法:如经典的磷酸钙共沉淀法、脂质体转染方法、和多种阳离子物质介导的技术;生物介导方法:有较为原始的原生质体转染,和现在比较多见的各种细菌介导的转染技术。理想细胞转染方法,应该具有转染效率高、细胞毒性小等优点。细菌介导的转染技术,是目前转染效率较高的方法,同时具有细胞毒性很低的优势。但是细菌转染方法的准备程序复杂,常常对细胞类型有很强的选择性,在一般实验室中很难普及。其它物理和化学介导的转染方法,则各有其特点。需要指出的一点,无论采用哪种转染技术,要获得较优的转染结果,可能都需要对转染条件进行优化。影响转染效率的因素很多,从细胞类型、细胞培养条件和细胞生长状态到转染方法的操作细节。蛋白表达和培养基的选择哺乳动物细胞系合成可溶的。太原细胞高效转染试剂报价
大部分外源DNA会被核酸酶降解或随细胞分裂而稀释。太原细胞高效转染试剂报价
细胞转染为什么不能加血清:传统的转染试剂一般会增加细胞的通透性,这样会把血清中的成分带入细胞,造成细胞毒性。阳离子脂质体,转染的过程是带正电的脂质体与核酸带负电的磷酸基团形成复合物被细胞内吞。血清中含有大量的蛋白质,在转染过程中,带负电的蛋白质可能干扰阳离子脂质体对核酸的吸附,影响转染效率。同时,也会将血清中的蛋白带入细胞,引发细胞毒性,故不能有血清转染。这些转染试剂要求在转染前换无血清培养基,转染后 4-6h在更换成有血清培养基,这其实是为了减轻转染造成的细胞毒性和转染效率的降低。太原细胞高效转染试剂报价
DNA细胞转染步骤:1.提前现在细胞铺板提前现在将细胞种植在24孔板中,以转染时细胞密度在60%左右为宜。2.转染过程⑴将0.8μg的DNA用25μl无血清稀释液稀释,充分混匀,制成DNA稀释液。注意:无血清稀释液建议采用OPTI-MEM、无血清DMEM或1640。⑵将2μlEntransterTM-H4000用25μl无血清稀释液体稀释,充分混匀,制成EntransterTM-H4000稀释液。室温静置5分钟。⑶将EntransterTM-H4000稀释液分别加入到DNA稀释液中,充分混匀(可用振荡器振荡或用加样器吹吸10次以上),室温静置15分钟。转染复合物制备完成。⑷将转染复合物加入到含...