设施环境不达标会给小鼠带来的影响有哪些？小鼠本身特性性情温顺，容易捕捉，胆小怕惊，不主动咬人。但性成熟的非同窝雄性易相互打斗并咬伤背部、尾部、生殖器等。但是1、若温度过高（超过30℃）会造成♂：睾丸萎缩或形成精子的能力下降；♀：性周期紊乱，泌乳能力下降或拒乳。日温差不能过大（≤3℃），因为对于裸鼠，不能有效的保持体温。2、湿度过大，会造成微生物易于繁殖，饲料、垫料易霉变，动物易患呼吸系统疾病；小仔发育不良，哺乳雌鼠吃仔。3、噪声超标可引起动物紧张、流产、产仔率下降和吃仔等现象。常州卡文斯实验鼠饲养环境恒温恒湿，减少环境应激影响。UOX小鼠售后服务
常用动物实验选择1.名称：KM小鼠主要用途：广泛应用于药理学、毒理学等领域研究以及药品、生物制品的生产与检定。简介：1926年美国Rockfeller研究所从瑞士引入白化小鼠培育成Swiss小鼠。1944年3月17日由汤飞凡教授从印度Hoffkine研究所引进Swiss小鼠，饲养在昆明国家防疫处。由于该小鼠起初引入地是昆明，故称之为昆明小鼠。解放后国家防疫处迁回北京天坛，更名为卫生部生物制品研究所。1950年小鼠随之引到北京天坛（检定所现址），当时保种9对。1953年10月移至北京东郊，1954年扩种，相继引到其他单位，现已遍布全国各地。特点：远交系小鼠，经50多年的选育，现在KM小鼠zl自发率极低。不同地饲养的昆明小鼠封闭群的生长发育与繁殖性能存在一定差异。但其共同特点是抗病力和适应力很强，繁殖率和成活率高。它在我国生物医学动物实验中约为小鼠总用量的70%。乳腺肿瘤小鼠交易价格常州卡文斯提供基因编辑实验鼠定制服务，助力前沿生物医学研究。
基于CRISPR/Cas9技术，我们拥有独有的全基因组单/多位点分析设计系统、高通量的gRNA载体组装技术、高效的遗传转化技术和基于云端的测序结果自动化分析体系；具有单基因/多基因敲除、短片段/长片段删除、单碱基/多碱基替换敲入和条件性敲除等多面的基因组编辑技术。特点：简单——只需提供基因ID或序列快速——快50个工作日提供Founder小鼠，全年提供全程服务高效——特有的技术，实现单基因、多基因敲除，条件性敲除，大片段（例如整个外显子区域或者lncRNA）敲除，DNA片段定点敲入（包括定点突变、GFP等标签Tag的敲入）
在动物实验中，为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化，常需将药物注入动物体内。给药的途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。实验动物常见的给用用药物使用方法法法式有：口服、静脉注射、腹腔注射、皮下注射、肌肉注射、椎管内注射、脑室内注射、皮内注射、淋巴腔注射、鼻腔和舌下给药等多种。灌胃法小鼠灌胃方法比较简单，需要关注的只有两点：一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线，方便灌胃针头进入，二是动作要轻柔，从口角进入，防止损失食道。操作步骤：1.抓住小鼠，使其头、颈和身体呈一直线。2.用1ml的注射器配灌胃针头。灌胃针头从小鼠的嘴角进入，压住舌头，抵住上颚，轻轻向内推进，进入食管后会有一个刺空感，进入食道后就可以推注药液。3.灌胃容积一般是0.1～0.2ml/10g，比较大0.35ml/10g，每只小鼠的灌胃最大容积不超过0.8ml。常州卡文斯实验鼠的微生物检测报告确保无特定病原体传染。
C57BL/6J小鼠主要用途：常被认作“标准”的近交系，为许多突变基因提供遗传背景。是学、生理学、免疫学、遗传学研究中常用的品系。简介：1921年立特(Little)用艾比·拉特洛坡(AbbyLathrop)的小鼠株，雌鼠57号与雄鼠52号交配而得C57BL1937年从C57BL分离出C57BL/6和C57BL/10两个亚系。1985年从Olac引到中国医学科学院实验动物研究所。特点：近交系小鼠，毛色黑色；补体活性高；较易诱发免疫耐受性；对结核杆菌敏感；干扰素产量高。是学、生理学、免疫学、遗传学研究常用的品系。乳腺自然发生率低，化学物质难以诱发乳腺和卵巢。12%有眼睛缺损；雌仔鼠16.8%，雄仔鼠3%为小眼或无眼。用可的松可诱发腭裂，其发生率达20%。对放射物质耐受力中等；补体活性高;较易诱发免疫耐受性。对结核杆菌敏感。对鼠痘病毒有一定抵抗力。干扰素产量较高。嗜酒精性高，肾上腺素类脂质浓度低。对百日咳组织胺易感因子敏感。常州卡文斯实验鼠在免疫缺陷模型应用中广受科研机构好评。裸鼠繁育
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腹腔注射操作步骤：1.抓取小鼠一般都是放在饲养笼上，提其尾巴中部，水平偏下往后轻拉，小鼠爪子会自然会抓住笼子，此时应该迅速抓住小鼠的颈背部的皮毛，比较好是抓在小鼠的耳朵处，这样可以更好固定小鼠的头部，以防被咬。但是，切记力气不要过大，容易使小鼠窒息。再将小鼠的尾巴用左手无名指或小拇指固定，这样就可以将小鼠整个躯干固定好，注意一定要让小鼠处于一个舒服的身身体部位置，如果小鼠躯干不能保持竖直，很容易扎到脏器，引起出血，影响实验。2.注射抓取小鼠后，应腹部向上，头呈低位。头呈低位可以使得脏器移至低位，避免扎伤。右手持注射器，插入小鼠腹部，注射部位为小鼠后肢根部连线处任一侧1.5cm处，缓慢以45度左右进针，进针深度小于1cm，进针的感受为局部皮肤凹陷消失和落空感。3.拔针：为了防止漏液，轻微旋转针头，再缓缓拔出。在实验前，准备酒精棉球，注射器在使用后要消毒才能给下一只小鼠使用，避免交叉染上。此外，注射前，也可以用酒精棉球擦拭小鼠皮肤，可以明显辨别药物是否注射到腹腔，如果看到鼓包，就是注射到皮下了。UOX小鼠售后服务
