小鼠特性体型小，发育成熟时体重：雄性20~40g，雌性18~40g；面部尖突，长有19根长长的触须，耳耸立呈半圆形、眼大、鼻尖，尾长与体长约相等。尾部表皮覆有小角质鳞片。（大约200片鳞片）毛色因品系品种而异常见有：白色、野灰色、黑色、棕色、黄色、巧克力色和肉桂色等。近年来，基因工程技术不断实现突破，以CRISPR/Cas9为首的基因编辑技术得到了普遍运用，使实验鼠大规模生产成为可能，快速推动了实验鼠行业发展进程。与发达国家相比，我国实验鼠市场起步较晚，还处于发展早期，随着国内实验鼠企业培育技术逐渐成熟、产品种类愈加丰富，市场国产化率正在提升。卡文斯实验鼠广泛应用于药物研发、基因编辑等领域。MRL-Lpr小鼠技术指导
WISTAR大鼠主要用途：多用于肿块瘤体、免疫、药理、内分泌。简介：1907年由美国维斯塔尔(Wistar)研究所育成，现己遍及世界各国的实验室。我国从日本及前苏联引进，是引进较早、使用较广阔、数量较多的大鼠品系之一。特点：远交系大鼠，头部较宽、耳朵较长、尾的长度小于身长。性周期稳定，繁殖力强，产仔多，平均每胎产仔在10只左右，生长发育快。10周龄时雄鼠体重可达280～300g，雌鼠达170-260g。性情温顺。对传染病的抵抗力较强。自发性肿块瘤体发生率低。目前各地饲养的Wistar大鼠的遗传状况差异较大。APP/PS1小鼠什么价格ICR/JCL小鼠是进行免疫药物筛选，复制病理模型较常用的实验动物。
实验鼠是指经人工培育，对其携带的微生物和寄生虫实行控制，遗传背景明确或者来源清楚，用于科学研究、教学、生产、检定以及其他科学实验的老鼠。实验鼠包括大鼠、小鼠、地鼠、豚鼠等，具有成熟早、繁殖能力强、对外来刺激敏感等特点。实验鼠是继人类之后第二种完成全基因组测序的哺乳动物，其基因组与人类高度同源，生理生化及生长发育的调控机理和人类基本一致，同时具有繁殖能力强、世代周期短、饲养成本低等特点，是目前应用较为广阔的实验动物之一，其他实验动物还包括实验猴子、实验兔子、实验猪等。随着基因工程技术的发展，特别是近年来以CRISPR/Cas9为首的基因编辑技术的普遍运用，使得大规模生产实验鼠成为可能，从而可以更加精细地模拟人类特定生理病理特征，在阐明生命机理规律、疾病诊断诊治完成完成疗程以及新药创制研发等方面具有不可替代的作用。
由于与人类基因有99%的相似性，小鼠可以被用于衰老、免疫、血液疾病、神经系统、感官疾病以及代谢性疾病的研究。也许你会觉得这些很抽象很难以理解，那么就让我借助“小鼠模型”来解释一下。什么是小鼠模型？与人类和其他哺乳动物一样，小鼠也会患有免疫、内分泌、神经、心血管、骨骼和其他复杂生理系统方面的疾病，例如病情ai变性症状、血压高出正常、糖尿病、骨质疏松症和青光眼等。于是科研工作者就试图通过遗传技术对小鼠进行基因编辑，从而建立起患有“单一”疾病的小鼠以帮助人类进行疾病研究。这些患有“单一”疾病的小鼠，就是小鼠模型。目前可用的小鼠模型不仅限于病情ai变性症状方面，糖尿病、肥胖、失明、亨廷顿氏病（舞蹈症）和焦虑症方面都建立了相应的小鼠模型。现如今，美国的杰克逊实验室（JacksonLaboratory）已经向全世界分发了2700种实验鼠，而这些实验鼠所首的疾病模型，正在帮助全世界的科学家进一步研究那些与人类息息相关的疾病。卡文斯实验鼠的繁育记录完整，确保科研可追溯性。
一些品种的小白鼠非常经典，它们的“科研生涯”可追溯到数百代前的祖先，造成了大家对实验鼠的刻板印象。其实，各种毛色的老鼠都在为科学献身。甚至，随着研究深入，科学家对实验鼠的要求走向多样化、精细化。从一开始的杂交、近交培育，到随机诱导基因突变，再到现在的精细基因编辑，百变实验鼠，为了人类的科学事业，承担了许多本不属于它们的人类疾病。全球生物研究处于快速发展阶段，包括实验鼠在内的实验动物行业是生物研发的关键平台，但是目前相关品系开发及配套设施仍然落后于市场需求，无论是生命科学研究还是新药开发，在此方面仍然面临无鼠可用的局面。实验鼠能够契合市场需求，具有良好的市场前景。江苏卡文斯作为常州区域实验鼠行业重点企业欢迎各位领导莅临！常州卡文斯实验鼠在行为学实验中表现稳定，数据可靠。DIO小鼠品系
卡文斯实验鼠在神经科学领域的研究中表现优异。MRL-Lpr小鼠技术指导
腹腔注射操作步骤：1.抓取小鼠一般都是放在饲养笼上，提其尾巴中部，水平偏下往后轻拉，小鼠爪子会自然会抓住笼子，此时应该迅速抓住小鼠的颈背部的皮毛，比较好是抓在小鼠的耳朵处，这样可以更好固定小鼠的头部，以防被咬。但是，切记力气不要过大，容易使小鼠窒息。再将小鼠的尾巴用左手无名指或小拇指固定，这样就可以将小鼠整个躯干固定好，注意一定要让小鼠处于一个舒服的身身体部位置，如果小鼠躯干不能保持竖直，很容易扎到脏器，引起出血，影响实验。2.注射抓取小鼠后，应腹部向上，头呈低位。头呈低位可以使得脏器移至低位，避免扎伤。右手持注射器，插入小鼠腹部，注射部位为小鼠后肢根部连线处任一侧1.5cm处，缓慢以45度左右进针，进针深度小于1cm，进针的感受为局部皮肤凹陷消失和落空感。3.拔针：为了防止漏液，轻微旋转针头，再缓缓拔出。在实验前，准备酒精棉球，注射器在使用后要消毒才能给下一只小鼠使用，避免交叉染上。此外，注射前，也可以用酒精棉球擦拭小鼠皮肤，可以明显辨别药物是否注射到腹腔，如果看到鼓包，就是注射到皮下了。MRL-Lpr小鼠技术指导
