由于与人类基因有99%的相似性，小鼠可以被用于衰老、免疫、血液疾病、神经系统、感官疾病以及代谢性疾病的研究。也许你会觉得这些很抽象很难以理解，那么就让我借助“小鼠模型”来解释一下。什么是小鼠模型？与人类和其他哺乳动物一样，小鼠也会患有免疫、内分泌、神经、心血管、骨骼和其他复杂生理系统方面的疾病，例如病情ai变性症状、血压高出正常、糖尿病、骨质疏松症和青光眼等。于是科研工作者就试图通过遗传技术对小鼠进行基因编辑，从而建立起患有“单一”疾病的小鼠以帮助人类进行疾病研究。这些患有“单一”疾病的小鼠，就是小鼠模型。目前可用的小鼠模型不仅限于病情ai变性症状方面，糖尿病、肥胖、失明、亨廷顿氏病（舞蹈症）和焦虑症方面都建立了相应的小鼠模型。现如今，美国的杰克逊实验室（JacksonLaboratory）已经向全世界分发了2700种实验鼠，而这些实验鼠所首的疾病模型，正在帮助全世界的科学家进一步研究那些与人类息息相关的疾病。基于CRISPR/Cas9技术，卡文斯实验鼠配套提供病理检测、基因型鉴定等增值服务。帕金森疾病小鼠供货时间
腹腔注射腹腔注射虽然简单，也有翻车的危险。一针下去，扎到内脏，呜呼哀哉。先将小鼠腹腔注射操作要点总结如下：抓鼠后选择低尾高位的位置；选择下腹部腹中线进针；小于60度进针有落空感；回抽未见血后推针，旋转半圈拔针。腹腔注射适合刺激性小的水溶性药物的用药，利用腹腔膜及大小网膜血管丰富，吸收面积大等特点，使药物快速入血。注意事项：1、腹腔注射只宜用等渗药液（如5％葡萄糖液、0.9％生理盐水）适当配无刺激性的药物（如肌苷、维生素B1、维生素C），而且注射量不宜太大，注射药液温度应与体温相近。2、注射时，小鼠头部要呈低位，使内脏向胸部侧偏移，针头不宜过长，以防止刺伤肠道、膀胱或其它内脏身体部位。3、进针时不要犹豫，切勿为避免刺伤身体部位，针头刚插入皮肤就向上挑起，此时针头极有可能还没刺破腹腔壁，只是将液体注射在腹部皮下。动脉粥样硬化小鼠构建卡文斯实验鼠的基因编辑模型高效，助力生命科学领域突破性研究。
小鼠特性体型小，发育成熟时体重：雄性20~40g，雌性18~40g；面部尖突，长有19根长长的触须，耳耸立呈半圆形、眼大、鼻尖，尾长与体长约相等。尾部表皮覆有小角质鳞片。（大约200片鳞片）毛色因品系品种而异常见有：白色、野灰色、黑色、棕色、黄色、巧克力色和肉桂色等。近年来，基因工程技术不断实现突破，以CRISPR/Cas9为首的基因编辑技术得到了普遍运用，使实验鼠大规模生产成为可能，快速推动了实验鼠行业发展进程。与发达国家相比，我国实验鼠市场起步较晚，还处于发展早期，随着国内实验鼠企业培育技术逐渐成熟、产品种类愈加丰富，市场国产化率正在提升。
品系名称:SHRRat***大鼠品系对照:WKY品系类别:近交系品系毛色:白化产品状态:***品系描述:来源:1961年左右，日本京都大学(KyotoUniversity)医学院Okamoto(Koz00kamoto)实验室在Wistar大鼠中将具有自发性***(尾静脉压即收缩压150~175mmHg)的雄性Wistar大鼠(7周龄)与血压稍高于平均水平的(收缩压140~150mmHg)雌性Wistar大鼠交配，从所得的F1***始进行近交筛选。在近交筛选过程中观察到，随着代数增加，自发性***发生率逐渐增大而发生的时间(年龄)越来越早，严重***(高于200mmHg)的大鼠发生率也越来越高。**终形成了所有雄性和雌性自发***发生率100%的近交系SHR,应用领域:遗传性***模型、***药物研究、多动症(ADHD)模型。卡文斯实验鼠在老年病学研究中的建模效果明显。
大鼠的抓取固定大鼠的抓取斯基本同小鼠，只不过大鼠比小鼠牙尖性猛，不易用袭击方式抓取，否则会被咬伤手指，抓取时为避免咬伤，可带上帆布手套。如果进行腹腔、肌肉皮下等注射和灌胃时，同样可采用左手固定法，只是用拇指和食指捏住鼠耳，余下三指紧捏鼠背皮肤，置于左掌心中，这样右手即可进行各种实验操作。也可伸开左手之虎口，敏捷地从后，一把抓住。若做手术或解剖等，则需事先麻醉或处死，然后用细棉线绳活缚腿，背卧位绑在大鼠固定板上；尾静脉注射时的固定同小鼠（只需将固定架改为大鼠固定盒即可）。注意事项：为了减少或避免大鼠在实验中发生的应激反应，以减少对实验者的攻击损伤，这里介绍几种抓取大鼠的技巧改进：（1）在抓取前可用一条清洁的毛巾蒙住大鼠全身，大鼠处于黑暗状态下神经会有所放松，看不到实验者的动作也会降低对实验者的攻击机会；（2）一般抓取大鼠都会抓住尾巴，但是有时大鼠尾巴不在身后而在其面前，这时实验者可能在抓取鼠尾的时候被大鼠攻击。这种情况一般可以轻推其腰臀部，使之变换姿势，待鼠尾调整到身后再进行抓取；（3）由于大鼠尾部被抓起时，会应激性地排便、排尿，所以比较好在粗糙表面上垫上报纸等，做好防范措施，减轻工作量。卡文斯实验鼠的饲养环境全程监控，确保动物健康与实验数据准确性。OT1小鼠饲养管理
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在动物实验中，为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化，常需将药物注入动物体内。给药的途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。实验动物常见的给用用药物使用方法法法式有：口服、静脉注射、腹腔注射、皮下注射、肌肉注射、椎管内注射、脑室内注射、皮内注射、淋巴腔注射、鼻腔和舌下给药等多种。灌胃法小鼠灌胃方法比较简单，需要关注的只有两点：一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线，方便灌胃针头进入，二是动作要轻柔，从口角进入，防止损失食道。操作步骤：1.抓住小鼠，使其头、颈和身体呈一直线。2.用1ml的注射器配灌胃针头。灌胃针头从小鼠的嘴角进入，压住舌头，抵住上颚，轻轻向内推进，进入食管后会有一个刺空感，进入食道后就可以推注药液。3.灌胃容积一般是0.1～0.2ml/10g，比较大0.35ml/10g，每只小鼠的灌胃最大容积不超过0.8ml。帕金森疾病小鼠供货时间
