荧光共振能量转移（FRET）是指在两个不同的荧光基团中，如果一个荧光基团（供体Donor）的发射光谱与另一个基团（受体Acceptor）的吸收光谱有一定的重叠，当这两个荧光基团间的距离合适时，就可观察到荧光能量由供体向受体转移的现象，即以前一种基团的激发波长激发时，可观察到后一个基团发射的荧光。常见的供体-受体对之间的有效距离通常为2-6nm，适用于许多蛋白质相互作用。染料通常是有机分子，如与蛋白质偶联的荧光素和罗丹明，或与感兴趣的蛋白质融合的荧光蛋白。小分子垂钓等高通量筛选。上海流式细胞高通量筛选
蛋白质片段互补分析(PCA，也称为双分子荧光互补)和双杂交筛选允许检测细胞中蛋白质相互作用的形成/抑制。PCA将单个检测蛋白（荧光素酶、GFP、GAL）分成两部分，这些部分与感兴趣的蛋白质-蛋白质相互作用融合；如果伴侣结合，检测蛋白会重新形成并检测到信号。高内涵成像平台（HCS）由于其能够提供出色的单细胞分析功能和短的数据采集时间获得大家的青睐。一般的实验流程为设计实验并使用自动分液仪将细胞接种到96、384或1536孔板中；然后加入化合物，由于细胞在孵育过程中会对化合物做出反应，随后对细胞进行染色，并通过HCS成像系统获取图像，通过软件分析获取的图像以确定化合物的剂量反应。贵州高通量筛选奇数高通量筛选的原理是什么。
在报告基因检测(也称为信号通路检测)中，报告蛋白的序列编码是在相关通路的转录控制下引入的。通过荧光或光学读数监测报告基因的表达，通过这些指标来间接反应启动子的或抑制程度。观察到的信号是整个通路的产物，筛选的化合物可以在该通路上的任何点相互作用。常见的报告基因是CAT（氯霉素乙酰转移酶）、GAL（β-半乳糖苷酶）、LAC（β-内酰胺酶）、LUC（荧光素酶）和GFP。我们通常使用的为LUC（荧光素酶），但也可以使用其他报告基因。
正如之前提到，在高通量筛选中Assay的检出方法有很多，用于衡量酶活性多的当属于荧光检出法和吸光度检出法。这两种方法都能非常便捷的与高通量进行匹配。但是这两种检出方法也有不适用的场景，比如吸光度检出法，在终点法测定（endpointassay）时，如果化合物库的吸收低于~410nm，实验的背景吸收会引入假阳性（false-positive）和假阴性（false-negative）结果。虽然假阳性结果可以通过动力学Assay或者验证Assay来解决，但是由于微量定量板有位于340~410nm的强吸收，所以仍旧会导致Z因子降低，直接结果就是较弱活性的苗头化合物将很难被筛选出来。而对于荧光检出法而言，自发荧光化合物库或者具有光敏特性的化合物库同样会遇到假阳性和假阴性结果。在某种程度上，选择合适的检出方法可以减少甚至避免上述问题，比如使用更长波段的光源，对于荧光检出来说，>500nm会是比较好的选择。微流控高通量筛选技术。
高通量筛选技术，是目前药物筛选领域研究的重要课题，近年来，对它的研究应用虽然已取得了长足的发展，但仍然存在许多难题，如体外模型的筛选结果与整体药理作用的关系；对高通量筛选模型的评价标准以及新的药物作用靶点的研究和发现等。随着医药学的进步，高通量筛选技术在创新药物的研发中，一定会开拓出更广阔的空间。我国进行药物高通量筛选的优势首先是化合物来源，且多为天然；其次是对化合物生物活性的筛选目的较明确，无目的合成的化合物较少；第三，我国传统药物为筛选研究提供了一个巨大的资源库，可从中药中提取分离筛选新的化合物。这些优势为药物的高通量筛选打下了坚实基础。传统高通量筛选设备。上海流式细胞高通量筛选
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我国进行药物高通量筛选的优势首先是化合物来源，且多为天然；其次是对化合物生物活性的筛选目的较明确，无目的合成的化合物较少；第三，我国传统药物为筛选研究提供了一个巨大的资源库，可从中药中提取分离筛选新的化合物。这些优势为药物的高通量筛选打下了坚实基础。我国药物高通量筛选初现规模：药物高通量筛选工作在我国起步较晚，且不规范。近几年，我国进行了外引内联的整体化、规模化基础建设，已初见成效。1996年中国医学科学院引进国内台Biomek2000型实验自动化工作站；1998年又引进台Topcount微量闪烁计数器，使放射配基实验、放射免疫实验等技术微量化、自动化。上海药物研究所、北京医学科学院分别成立了药物筛选专门机构，开始从事大规模筛选工作。上海流式细胞高通量筛选
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