细胞转染方法:1.脂质体转染法阳离子脂质体表面带正电荷,能与核酸的磷酸根通过静电作用,将DNA分子包裹入内,形成DNA脂复合物,也能被表面带负电的细胞膜吸附,再通过融合或细胞内吞进入细胞。脂质体转染适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中,是目前实验室较方便的转染方法之一,其转染率较高,优于磷酸钙法。由于脂质体对细胞有一定的毒性,所以转染时间一般不超过24小时。常用细胞类型:cos-7、BHK、NIH3T3、Hela等2.电穿孔转染法电流能够可逆地击穿细胞膜形成瞬时的水通路或膜上小孔促使DNA分子进入胞内,这种方法就是电穿孔。当遇到某些脂质体转染效率很低或几乎无法转入时建议用电穿孔法转染。一般情况下,高电场强度会杀死50%-70%的细胞。现在针对细胞死亡开发出了一种电转保护剂,可以较大的降低细胞的死亡率,同时提高电穿孔转染效率。细胞铺板密度用于转染的较佳细胞密度根据不同的细胞类型或应用而异。芜湖太原细胞高效转染试剂
细胞转染之PEI转染法:1.细胞分盘:通过胰酶消化收集细胞,用适当的完全培养基以1×105至4×105细胞/cm2的密度平铺细胞于35mm培养皿上(根据实验需要选择培养皿,使细胞贴壁后所占面积达到培养皿总面积的70-90%)。将细胞置于含5%CO2的37℃温箱中孵育8-24h,当细胞贴壁完全后即可开始转染。转染前2h换液(用1.5ml无血清培养基置换旧的培养基)。注:PEI转染法对细胞生长有克制作用,在换液前细胞几乎不生长,所以需要密度比较大时做转染。2.制备PEI-DNA混合物以35mm组织培养皿用240μl反应总体积为例。先在无菌EP管中加入120μl1×HBS,再加入质粒DNA(总量1-3μg为佳),混匀后加入等体积PEI工作液,充分混匀后室温静置20-30min,较后将这240μl的PEI-DNA混合液逐滴加入上述单层细胞的细胞培养基中,轻轻摇动平皿混匀后置于含5%CO2的37℃温箱孵育。无锡珠海细胞高效转染试剂总染色体重组或基因调控变化等而演化。
瞬时转染和转染效率的监测:基因的瞬时表达在24-72小时内就结束了。这种快速的瞬时表达非常适用于验证质粒表达和监测转染步骤的效率。可以使用报告基因来确定优化条件,其表达蛋白易检测,在目的细胞中不含此蛋白或水平很低。常用的报告基因包括氯霉素乙酰转移酶(CAT),绿色荧光蛋白(GFP),荧光素酶(Lux或Luc)以及b-半乳糖苷酶(b-gal)。可以使用简单的非同位素方法检测b-gal的表达以测定转染效率和活性。pCMVSPORT-bgal质粒包含CMV启动子调控下的LacZ基因,转染入真核细胞内后可以直接表达bgal。结合简单的检测步骤,可以做为监测转染条件的一种方便灵敏的方法。
稳定转染细胞系的筛选:生长的细胞比不分裂的细胞更快的受到GENETICIN物品的影响。转染后,在开始筛选前等待48-72小时,使细胞表达足够量的抗性酶,保证在开始筛选时可以自我保护。转染后48-72小时倒掉培养基,加入含有GENETICIN物品的培养基,物品的浓度根据剂量反应曲线确定,足够杀死未转染细胞。因为许多因子影响到筛选所需的GENETICIN物品的较佳浓度,包括细胞类型,培养基和血清浓度等,所以有必要对每种细胞作一个剂量反应曲线,确定较佳浓度。筛选较多可能需要一周时间,因为在致死剂量的GENETICIN物品存在条件下,细胞会分裂1-2次。在次培养细胞时使用较低剂量的物品,一般是筛选剂量的一半。筛选后的细胞一般是离散的克隆,根据实验目的不同,可以分别纯化(克隆),收集进行大量培养或染色并进行抗性克隆的计数。对于转染相同量的DNA所需的较佳阳离子脂质体试剂的量会因细胞密度而异。
细胞转染效率低下的几个大坑:1.试剂过期有时候转染效率低下,还要考虑会不会存在试剂过期的情况。毛博当年做转染整整半年,百思不得其解。较后发现,原来是Lipofectamine2000过期了。换了之后,立马成功。根据我的经验,尽量使用开封半年内的,因为过了半年后,就算没有过失效期,但是细胞毒性较大增加,而转染效率却较大下降。千万不要为了省钱,影响实验进度哈。2.未加血清转染后未及时加入血清,会导致细胞大量死亡。一般要在转染后的4-6小时换液且换为有血清的培养基。根据毛博的经验,其实也可以在原来的无血清培养基里面滴加血清。这个时候,较好不要换液,不要打扰细胞,让它安安静静地休息。但是也不能过早加入血清。过早的话,会引起未转染的细胞疯狂生长。细胞易于生长到高密度并合成更多蛋白。北京细胞高效转染试剂哪家便宜
有血清时的转染 血清一度曾被认为会降低转染效率。芜湖太原细胞高效转染试剂
细胞转染:(1)转染试剂的准备A.将400ul去核酸酶水加入管中,震荡10秒钟,溶解脂状物。B.震荡后将试剂放在-20摄氏度保存,使用前还需震荡,。(2)选择合适的混合比例(1:1-1:2/脂质体体积:DNA质量)来转染细胞。在一个转染管中加入合适体积的无血清培养基。加入合适质量的MyoD或者EGFP的DNA,震荡后在加入合适体积的转染试剂,再次震荡。(3)将混合液在室温放置10—15分钟。(4)吸去培养板中的培养基,用PBS或者无血清培养基清洗一次。(5)加入混合液,将细胞放回培养箱中培养一个小时。(6)到时后,根据细胞种类决定是否移除混合液,之后加入完全培养基继续培养24-48小时。芜湖太原细胞高效转染试剂
DNA细胞转染步骤:1.提前现在细胞铺板提前现在将细胞种植在24孔板中,以转染时细胞密度在60%左右为宜。2.转染过程⑴将0.8μg的DNA用25μl无血清稀释液稀释,充分混匀,制成DNA稀释液。注意:无血清稀释液建议采用OPTI-MEM、无血清DMEM或1640。⑵将2μlEntransterTM-H4000用25μl无血清稀释液体稀释,充分混匀,制成EntransterTM-H4000稀释液。室温静置5分钟。⑶将EntransterTM-H4000稀释液分别加入到DNA稀释液中,充分混匀(可用振荡器振荡或用加样器吹吸10次以上),室温静置15分钟。转染复合物制备完成。⑷将转染复合物加入到含...